

在癌症免疫治疗和自身免疫性疾病领域,T细胞疗法(如CAR-T、TCR-T等)已经取得了令人瞩目的临床成功。然而,这种”活的药物”在走向更广泛临床应用时,始终面临着一个难以逾越的鸿沟——缺乏可规模化的”现货型”(off-the-shelf)T细胞生产平台。
人多能干细胞(hPSCs)因其无限的自我更新能力、多向分化潜能以及易于进行基因编辑等优势,被公认为是解决T细胞来源问题的理想”种子细胞”。然而,将hPSCs转化为功能性T细胞的过程并非易事。T细胞的发育高度依赖于胸腺微环境,现有的培养方法都难以在悬浮培养条件下实现大规模扩增。
近日,北京大学研究团队在《Stem Cell Reports》上发表最新研究成果,成功开发了一种基于悬浮培养的人工胸腺类器官(Gel-ATO)系统。该系统不仅实现了从hPSCs向功能性T细胞的高效诱导,更通过旋转悬浮培养技术实现了T细胞的规模化生成,为通用型T细胞疗法的工业化生产提供了极具潜力的概念验证方案。
该研究采用艾沐蒽的ImmuHub® TCR测序分析系统验证了Gel-ATO系统诱导生成的iT细胞的克隆多样性,与天然胸腺T细胞具有高度相似性。是该研究证明Gel-ATO体系优越性的核心证据之一。


研究团队首先建立了一种基于Matrigel(基质胶)的人工胸腺类器官系统(Gel-ATO)。在该系统中,研究人员将hPSC衍生的iHPCs与MS5-hDLL4基质细胞共同包封,为T细胞发育提供了必要的三维微环境和细胞间接触。
从hCiPSC-3细胞系出发,通过逐步诱导原条样中胚层、动脉型造血内皮(HE)细胞,最终获得了CD34+ iHPCs。将这些祖细胞置入Gel-ATO后,T细胞的发育呈现出高度有序的时空轨迹:第1周即可检测到CD7+ T谱系标志物的表达;第2周约70%的细胞发育为CD7+CD5+早期胸腺祖细胞(ETP);第3周这一比例超过80%;至第4周,约90%的CD7+CD5+细胞进一步分化为CD4+CD8+双阳性(DP)细胞。到第6-7周,系统中开始检测到表达CD3的成熟T细胞标志物。
该系统的通用性也得到了验证。当使用表达NY-ESO-1特异性TCR 1G4的hCiPSCs作为起始细胞时,Gel-ATO系统成功生成了具有抗原特异性的iT细胞,证明了该平台在定制化T细胞生产中的应用潜力。
研究团队从体外和体内两个层面全面评估了生成的iT细胞是否具备真正的生理功能。
在表型特征上,Gel-ATO衍生的iT细胞表达典型的Naive T细胞标志物(CD45RA+CD45RO-,CCR7+)。CFSE增殖实验表明,这些细胞在抗CD3/CD28/CD2抗体刺激下能够有效增殖;其中1G4-iT细胞在激活后14天内实现了近100倍的扩增。在体外杀伤实验中,1G4-iT细胞对表达NY-ESO-1抗原的K562靶细胞表现出高度特异性的细胞毒性。
体内实验进一步证实了其抗肿瘤效力。在NPG荷瘤小鼠模型中,输注Gel-ATO衍生的iT细胞显著抑制了肿瘤生长,展现了明确的体内治疗潜力。
在转录组层面,Bulk RNA-seq分析显示T谱系关键基因(TCF7、LEF1、BCL11B等)在分化过程中逐步上调。PCA分析证实Gel-ATO衍生的iT细胞与天然胸腺DP/SP细胞高度相似。TCR β 测序结果更是令人振奋:iT细胞展现出与胎儿胸腺T细胞相似的CDR3长度分布和V基因重组多样性(图D、E),表明该系统生成了高度多样化的T细胞库,而非单一克隆的异常扩增。单细胞RNA-seq进一步揭示了T/NK谱系的异质性,DP iT细胞维持PTCRA表达,提示其尚未完全完成正选择,保留了进一步成熟的潜力。

尽管Matrigel基Gel-ATO系统在功能上表现优异,但Matrigel本身在悬浮培养条件下难以形成规则的球形类器官,且易粘附于培养器皿,这成为规模化生产的物理障碍。
为此,研究团队转向生物相容性更好、更适合悬浮培养的海藻酸钠(alginate)作为替代水凝胶。经过浓度优化,0.5%海藻酸钠被确定为最佳条件。然而,纯海藻酸钠系统(A-ATO)的iT细胞产量仅为Matrigel系统的约1/10,表明单纯的物理包封不足以支持高效分化。
关键突破来自于将海藻酸钠与含RGD肽段的VitroGel-RGD混合(AV-ATO系统)。RGD肽段提供了细胞黏附所需的整合素结合位点,显著改善了细胞-基质相互作用,使iT细胞产量大幅提升,成功实现了从Matrigel到无动物成分水凝胶的平稳过渡。
为了进一步突破规模化瓶颈,研究团队将AV-ATO系统置于旋转培养瓶中(R-S-ATO),通过流体剪切力模拟体内血流动力学环境。
与静态悬浮培养相比,R-S-ATO系统展现出惊人的优势:iT细胞的分化动力学保持一致,但淋巴祖细胞比例显著提高,CD7+CD5+淋巴细胞产量提升了近20倍。在450 mL大规模培养体系中,成功获得了约3×10⁷个CD7+CD5+CD3+ iT细胞,最大产量达到约66,000个/mL。这些R-S-ATO衍生的iT细胞经激活后可扩增近40倍,高表达CD25、4-1BB等活化标志物,并保留了抗原特异性杀伤活性。
机制探索揭示了旋转悬浮培养的分子基础。RNA-seq分析显示,与AV-ATO相比,R-S-ATO系统显著上调了CD8 TCR信号通路、免疫反应通路及淋巴细胞介导的信号通路。尤为关键的是,流体剪切应力响应转录因子KLF2、机械敏感离子通道PIEZO1以及LFA-1黏附受体(ITGAL/ITGB2)的表达显著上调。这表明,适当的机械力刺激不仅改善了营养物质的传递,更直接激活了促进T细胞发育和功能的信号网络,实现了”力学-生物学”的协同增效。


该研究巧妙地将发育生物学原理、材料科学与生物反应器工程融为一体,为T细胞疗法的规模化生产开辟了新路径。Gel-ATO系统不仅重现了T细胞在胸腺中的发育程序,更通过旋转悬浮培养引入了力学调控维度,实现了产量与功能的双重突破。尽管距离临床转化仍有技术关卡需要攻克,但该研究为”现货型”细胞治疗的工业化时代投下了一枚重要的基石。
文章来源
Lei Q , et al. Scalable generation of T lymphocytes from human pluripotent stem cells in suspended organoids. Stem Cell Reports. 2026 Sep 3:103076.

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ImmuHub®适用基因座

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